Test À L Oxidase - Garder L'Endroit Propre - Traduction Anglaise &Ndash; Linguee

Sat, 29 Jun 2024 07:05:11 +0000
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Pour l'amidon, on peut montrer que l'hydrolyse par la salive ne conduit pas à l'apparition de glucose, contrairement à ce qui se passe dans une hydrolyse acide. Recherche d'enzymes dans des graines La glucose-oxydase utilisée comme test de présence de glucose, permet, indirectement de découvrir la présence d'enzymes dans des graines germées. ROTITEST®bandelettes oxydase | Détection de cytochrome oxydase | Réactifs de test | Identification des microorganismes | Microbiologie | Life Science | Carl Roth - France. On peut comparer les résultats obtenus avec des graines germées et des graines non germées. Si l'on relie ces expériences avec celles réalisées sur l'amidon, on montre la présence dans les graines germées de deux enzymes, une amylase et une maltase.

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Injectez au moins la solution de lavage de l'après-dilution 0. 35ml dans le puits, et marinez 1~2 minutes. Répétez ce processus selon vos conditions. Méthode de lavage automatique: s'il y a machine à laver automatique, elle devrait seulement être employée dans l'essai quand vous êtes tout à fait au courant de sa fonction et représentation. Précision précision d'Intra-analyse (précision dans une analyse): 3 échantillons avec le bas, moyen et de haut niveau GAZON humain ont été examinés 20 fois d'un plat, respectivement. La glucose-oxydase : résultats EXAO - SVT Lyon. précision d'Inter-analyse (précision entre les analyses): 3 échantillons avec le bas, moyen et de haut niveau GAZON humain ont été examinés de 3 plats différents, 8 répliques dans chaque plat. Cv (%) = SD/meanX100 Intra-analyse: Cv <10> Inter-analyse: Cv <12> Conditions de spécimen 1. Ne peut pas détecter l'échantillon qui contiennent NaN3, parce que NaN3 empêche HRP actif. 2. extrayez dès que possible après collection de spécimen, et selon la littérature appropriée, et devriez être expérience dès que possible après l'extraction.

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2. Pour chaque étape, ajoutez l'échantillon avec l'injecteur témoin qui devrait être calibré fréquemment, afin d'éviter la tolérance expérimentale inutile. 3. il opération sera accord effectué aux instructions strictement. Et des résultats d'essai doivent être basés sur les lectures du lecteur d'enzymes. 4. Afin d'éviter la contamination transversale, on l'interdit de réutiliser la membrane de plat de tête et de joint d'aspiration dans des vos mains. 5. Tout l'échantillons, tampon de lavage et chaque genre de rejet devraient selon le processus matériel contagieux. 6. Les agents oisifs seront mis ou couverts. Test à l'oxydase. N'employez pas le réactif avec différents groupes. Et employez-les avant date expirée. 7. Le substrat B est sensible à la lumière. On interdit l'exposition prolongée à la lumière. Méthode de lavage Méthode manuellement de lavage: secouez loin restent liquides dans les plats d'enzymes; placez quelques papiers adonnés à la boisson sur le banc d'essai, et agitez les plats sur le à l'envers fortement.

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Spécificité La glucose-oxydase est spécifique du β-D-glucose. Elle catalyse l'oxydation du β-D-glucose selon la réaction suivante: glucose + O 2 + H 2 O -------> glucono-1, 4-lactone + H 2 O 2 Le glucose à pH 7 se trouve sous forme cyclique à raison de 36, 4% de β-D-glucose et de 63. 6% d'α-D-glucose. La forme linéaire représente une fraction négligeable. L'oxydation du β-D-glucose déplace l'équilibre et l'α-D-glucose se transforme rapidement en β-D-glucose. [Microbiologie] test catalase oxydase pour les bactéries. L'action de la glucose-oxydase sur le glucose se traduit par une très rapide consommation de dioxygène très facilement mesurable avec production de gluconolactone et de peroxyde d'hydrogène. Avec tous les autres sucres, la consommation de dioxygène n'a pas lieu. Spécificité de substrat de la glucose-oxydase Quels sont les sucres les plus intéressants? Ceux qui ont une structure proche du β-D-glucose. On peut utiliser le L-glucose qui est cher ou le D-galactose beaucoup moins coûteux. Formules linéaires des trois oses p H Température Ce travail est difficile à mener à bien, car il faut veiller à mettre à la même température la solution de glucose, l'enzyme et le récipient qui recevra le mélange.

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Les bactéries et les levures cultivées sur des milieux contenant de fortes concentrations de glucose montrent une activité oxydase inhibée, il est donc recommandé de tester les colonies cultivées sur des milieux sans excès de sucre, telles que la gélose nutritive., La gélose de soja tryptique est également un excellent milieu. les Bactéries cultivées sur des milieux contenant des colorants peuvent donner des résultats aberrants. Les réactifs d'essai tueront efficacement les micro-organismes, de sorte que la sous-culture doit être effectuée avant d'ajouter un réactif à une culture active. Le test d'oxydase peut être utilisé dans l'identification présumée de Neisseria et dans la différenciation et l'identification des bacilles à gram négatif. Les organismes à oxydase positive doivent être examinés par coloration de gram pour déterminer la morphologie et la réaction de gram., Des tests biochimiques supplémentaires sont recommandés pour une identification complète. L'utilisation d'un nichrome ou d'une autre boucle contenant du fer peut entraîner des réactions faussement positives.

le test d'oxydase détecte la présence d'un système de cytochrome oxydase qui catalysera le transport d'électrons entre les donneurs d'électrons dans les bactéries et un colorant redox – tétraméthyl-p-phénylène-diamine. Le colorant est réduit à une couleur violet foncé., Ce test est utilisé pour aider à l'identification de Pseudomonas, Neisseria, Alcaligens, Aeromonas, Campylobacter, Vibrio, Brucella et Pasteurella, qui produisent tous l'enzyme cytochrome oxydase. Un certain nombre de réactifs peuvent être utilisés pour ce test., Kovacs Oxidase Reagent: 1% tetra-methyl-p-phenylenediamine dihydrochloride, in water Gordon and McLeod's Reagent: 1% dimethyl-p-phenylenediamine dihydrochloride, in water Gaby and Hadley (indophenol oxidase) Reagent: 1% α-naphthol in 95% ethanol 1% p-aminodimethylaniline HCL Principle of Oxidase Test Cytochrome containing organisms produce an intracellular oxidase enzyme. This oxidase enzyme catalyzes the oxidation of cytochrome c., Les organismes qui contiennent du cytochrome c dans le cadre de leur chaîne respiratoire sont oxydase-positifs et virent le réactif bleu/violet.

Si elle ne peut pas, le spécimen peut être maintenu dans le ℃ -20 pour préserver, Avoid a répété les cycles gel-dégel. 3. la coagulation de sérum à la température ambiante 10-20 minutes, minute de la centrifugation 20 à la vitesse de t/mn 2000-3000 enlèvent le surnageant, si la précipitation apparaissait, centrifugeur encore. a adapté à l'EDTA ou le plasma de citrate comme anticoagulant, mélange 10-20 minutes, minute de la centrifugation 20 à la vitesse de t/mn 2000-3000 enlèvent le surnageant, si la précipitation apparaissait, centrifugeur encore. 5. Urine-rassemblez pour poursuivre un conteneur stérile, la centrifugation 20 que la minute à la vitesse de t/mn 2000-3000 enlèvent le surnageant, si la précipitation apparaissait, centrifugeur encore. L'ofHydrothorax d'opération et la référence de fluide céphalo-rachidien à elle. la culture surnageant-détecter les composants sécréteurs, se rassembler pour poursuivre un conteneur stérile, minute de la centrifugation 20 à la vitesse de t/mn 2000-3000 pour enlever le surnageant, détecter la composition des cellules, suspension de cellules de Dilut avec PBS (PH7.

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