Coloration De Papanicolaou Définition — Le Livret D'Apprentissage - Cfa Sacef
Bonjour, J'ai fait une coloration de Schiff (PAS) aujourd'hui, en vue de mettre en évidence la présence (ou l'absence) de glycocalyx sur mes cellules, mais je galère pour l'interprétation, je n'ai jamais fait cette technique avant et personne dans mon entourage n'a d'expérience avec. Je manque cruellement de recul et d'information sur la technique... Je vous soumets la photo suivant: à gauche sont des cellules contrôles, sans traitement, à droite les mêmes cellules ayant subi une hydrolyse acide. D'après les photos de cette coloration trouvée sur internet (eh oui, j'en suis à regarder des photos sur google... ), je n'ai pas l'impression qu'il y ait d'enveloppe de polysaccharides autour de mes contrôles (pas de différence de teinte très forte avec les noyaux, comme par exemple sur les photos de wikipédia: Mais d'un autre côté mes noyaux ne sont pas franchement bleus, alors qu'ils devraient. Qu'en pensez vous? Autre question: en regardant de loin je ne vois pas de différence entre mon contrôle et mes cellules traitées, mais en zoomant un peu j'ai l'impression que mon contrôle a un cytoplasme plus vif que mes traités.
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La coloration de tissu biologique est souvent nécessaire pour l identification. Certaines colorations sont compatibles avec la vie cellulaire, d autres nécessitent la fixation des tissus, et parfois… … Wikipédia en Français Coloration Au Bleu De Trypan — La coloration au bleu de trypan est une méthode de coloration des cellules mortes. Principe Molécule du bleu de trypan Le colorant utilisé, le bleu de trypan, a tendance à entrer dans les cellules qu il rencontre. Une fois dans la cellule, la… … Wikipédia en Français Coloration au bleu de trypan — La coloration au bleu de trypan est une méthode de coloration des cellules mortes. Une fois dans la cellule, la… … Wikipédia en Français Coloration De Ziehl-Neelsen — La coloration de Ziehl Neelsen est une méthode de coloration permettant l identification des mycobactéries au microscope. Elle fait partie des colorations qui mettent en évidence l acido alcoolo résistance, caractère fondamental des mycobactéries … Wikipédia en Français Coloration de ziehl-neelsen — La coloration de Ziehl Neelsen est une méthode de coloration permettant l identification des mycobactéries au microscope.
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La coloration PAS (pour Periodic Acid Shiff) est la technique la plus polyvalente et la plus utilisée pour la visualisation des glucides. Du point de vue du diagnostic, la coloration PAS est l'une des colorations spéciales les plus utiles et les plus utilisées dans le laboratoire de pathologie. Elle peut aider d'un part au diagnostic différentiel des tumeurs et d'autre part à détecter les maladies fongiques. La coloration PAS met en évidence les mucines (épithélium à bordures en brosse), les membranes basales, le glycogène ainsi que les filaments et spores mycéliens. La réaction à l'acide périodique de Schiff correspond à l'oxydation de certains polysaccharides par l'acide périodique, révélée par une coloration rouge (fixation de la leucofuchsine de Schiff). Le PAS est couramment associé à la diastase (PAS-diastase) qui digère le glycogène mais laisse persister la coloration rosée des mucines intra ou extracellulaires. Dans les tumeurs indifférenciées, cette coloration est utile pour orienter le diagnostic vers une origine glandulaire (adénocarcinome).
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Mise en évidence des polysaccharides sur coupes paraffine par la réaction PAS ( P eriodic A cid S chiff) Il s'agit d'une coloration de mise en évidence des polysaccharides, spécifique de ceux ci si elle est réalisée dans des conditions "contrôlées". Le protocole de coloration appliqué à des coupes paraffine de 8 μm d'épaisseur est fourni sur cette page ainsi que le principe de cette coloration. Deux microphotographies sont présentées ci - dessous pour illustrer le résultat de cette coloration réalisée dans des conditions contrôlées. Protocole de coloration Les coupes sont successivement:. Déparafinées et réhydratées (voir coloration hématoxyline). Traitées à l'acide périodique 0. 5% 15 minutes à t° labo, excepté une lame témoin maintenue dans l'eau.. Lavées 10 min l'eau courante puis à l'eau distillée.. Plongées dans le colorant " réactif de Schiff " à l'abri de la lumière et de l'oxygène. La durée de la coloration varie en fonction du tissu et du fixateur. A titre d'indication elle est de 15 minutes pour des coupes d'embryons de maïs fixés au FAA et un colorant neuf..
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Flèche bleue: épiderme avec sa cuticule (flèche rose).
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